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モデル実験プロトコール |
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ICONプローブを用いたメチル化DNAの配列選択的定量実験
(リアルタイムPCR使用)
※注意
ここに記載してあるプロトコールは初期段階のモデルケースとしてのものです。
各種溶液の濃度などは今後の検討により、さらに良い条件が出てくることが
考えられます。あくまで参考としてご覧ください。
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反応 |
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・標的DNA溶液(100nM) 5μL
・ICONプローブミックス(センス鎖用・アンチセンス鎖用 各100nM) 5μL
・ヘキサシアノ鉄(Ⅲ)酸カリウム水溶液(1M) 5μL
・バッファーミックス(Tris-HCl(pH=7.7 100mM)、EDTA(1mM)、
NaCl(2M)) 25μL
これらを反応チューブ内で混合、95℃で5分加熱後、0℃に急冷
↓
オスミウム酸カリウム水溶液(25mM) 10μL
を加え、55℃ 1時間加熱
↓
脱塩処理を行い、そのろ液を後の実験に用いる
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定量 |
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脱塩したろ液をプライマー、dNTP、DNAポリメラーゼ、SYBR GreenⅠ
を含むPCR反応液に分注
↓
リアルタイムPCRにて反応を行う
(反応条件: 95℃ 5秒 → 60℃ 10秒 → 72℃ 15秒) × 50サイクル
↓
リアルタイム追跡(470nm励起/510nm検出)によって得られた
データを解析する
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検量線 |
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以上の反応を標準サンプル(メチル化0%、メチル化100%等)に対しても
行い、それらの増幅曲線立ち上がり点から検量線を作成する。
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参考 |
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◆検量線用サンプルの作成方法
1.目的配列を含む300base程度をPCRにて増幅し、精製を行う
(PCRによりメチル化部分が非メチル化状態になったサンプルが
増幅される)
→メチル化0%サンプル
2.1で得られたサンプルに対して、市販のメチル化キットを用いて
メチル化処理を行う
→メチル化100%サンプル
3.1と2を比率を変えて混合し、中間濃度サンプルとする。
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